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基本情報
登録情報 | データベース: EMDB / ID: EMD-10409 | |||||||||
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タイトル | In situ cryo-electron tomogram from Chlamydomonas reinhardtii of a proteasome cluster at the endoplasmic reticulum | |||||||||
![]() | In situ cryo-electron tomogram from Chlamydomonas reinhardtii, showing a cluster of proteasomes at the ER membrane. | |||||||||
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生物種 | ![]() ![]() | |||||||||
手法 | 電子線トモグラフィー法 / クライオ電子顕微鏡法 | |||||||||
![]() | Albert S / Schaffer M / Baumeister W / Engel BD | |||||||||
![]() | ![]() タイトル: Direct visualization of degradation microcompartments at the ER membrane. 著者: Sahradha Albert / Wojciech Wietrzynski / Chia-Wei Lee / Miroslava Schaffer / Florian Beck / Jan M Schuller / Patrice A Salomé / Jürgen M Plitzko / Wolfgang Baumeister / Benjamin D Engel / ![]() ![]() 要旨: To promote the biochemical reactions of life, cells can compartmentalize molecular interaction partners together within separated non-membrane-bound regions. It is unknown whether this strategy is ...To promote the biochemical reactions of life, cells can compartmentalize molecular interaction partners together within separated non-membrane-bound regions. It is unknown whether this strategy is used to facilitate protein degradation at specific locations within the cell. Leveraging in situ cryo-electron tomography to image the native molecular landscape of the unicellular alga , we discovered that the cytosolic protein degradation machinery is concentrated within ∼200-nm foci that contact specialized patches of endoplasmic reticulum (ER) membrane away from the ER-Golgi interface. These non-membrane-bound microcompartments exclude ribosomes and consist of a core of densely clustered 26S proteasomes surrounded by a loose cloud of Cdc48. Active proteasomes in the microcompartments directly engage with putative substrate at the ER membrane, a function canonically assigned to Cdc48. Live-cell fluorescence microscopy revealed that the proteasome clusters are dynamic, with frequent assembly and fusion events. We propose that the microcompartments perform ER-associated degradation, colocalizing the degradation machinery at specific ER hot spots to enable efficient protein quality control. #1: ![]() タイトル: Direct visualization of degradation microcompartments at the ER membrane 著者: Albert S / Wietrzynski W / Lee CW / Schaffer M / Beck F / Schuller JM / Salome PA / Plitzko JM / Baumeister W / Engel BD | |||||||||
履歴 |
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構造の表示
ムービー |
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添付画像 |
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ダウンロードとリンク
-EMDBアーカイブ
マップデータ | ![]() | 337 MB | ![]() | |
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ヘッダ (付随情報) | ![]() ![]() | 12.8 KB 12.8 KB | 表示 表示 | ![]() |
画像 | ![]() | 185.5 KB | ||
アーカイブディレクトリ | ![]() ![]() | HTTPS FTP |
-関連構造データ
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リンク
EMDBのページ | ![]() ![]() |
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マップ
ファイル | ![]() | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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注釈 | In situ cryo-electron tomogram from Chlamydomonas reinhardtii, showing a cluster of proteasomes at the ER membrane. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
投影像・断面図 | 画像のコントロール
画像は Spider により作成 これらの図は立方格子座標系で作成されたものです | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
ボクセルのサイズ | X=Y=Z: 13.68 Å | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
密度 |
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対称性 | 空間群: 1 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
詳細 | EMDB XML:
CCP4マップ ヘッダ情報:
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-添付データ
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試料の構成要素
-全体 : Whole Chlamydomonas cells
全体 | 名称: Whole Chlamydomonas cells |
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要素 |
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-超分子 #1: Whole Chlamydomonas cells
超分子 | 名称: Whole Chlamydomonas cells / タイプ: cell / ID: 1 / 親要素: 0 詳細: Grown suspended in TAP media, with normal atmosphere aeration and constant light |
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由来(天然) | 生物種: ![]() ![]() |
-実験情報
-構造解析
手法 | クライオ電子顕微鏡法 |
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![]() | 電子線トモグラフィー法 |
試料の集合状態 | cell |
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試料調製
緩衝液 | pH: 7 / 詳細: TAP media |
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グリッド | モデル: Quantifoil R2/1 / 材質: COPPER / メッシュ: 200 / 支持フィルム - 材質: CARBON / 支持フィルム - トポロジー: HOLEY / 前処理 - タイプ: GLOW DISCHARGE / 前処理 - 雰囲気: AIR |
凍結 | 凍結剤: ETHANE-PROPANE / 装置: FEI VITROBOT MARK IV / 詳細: blotted from back for 10 seconds before plunging. |
切片作成 | 集束イオンビーム - 装置: OTHER / 集束イオンビーム - イオン: OTHER / 集束イオンビーム - 電圧: 30 kV / 集束イオンビーム - 電流: 0.03 nA / 集束イオンビーム - 時間: 2000 sec. / 集束イオンビーム - 温度: 95 K / 集束イオンビーム - Initial thickness: 1000 nm / 集束イオンビーム - 最終 厚さ: 150 nm 集束イオンビーム - 詳細: See https://bio-protocol.org/e1575 for detailed procedure.. The value given for _emd_sectioning_focused_ion_beam.instrument is FEI Quanta FIB. This is not in a list ...集束イオンビーム - 詳細: See https://bio-protocol.org/e1575 for detailed procedure.. The value given for _emd_sectioning_focused_ion_beam.instrument is FEI Quanta FIB. This is not in a list of allowed values set(['DB235', 'OTHER']) so OTHER is written into the XML file. |
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電子顕微鏡法
顕微鏡 | FEI TITAN KRIOS |
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特殊光学系 | エネルギーフィルター - 名称: GIF Quantum LS / エネルギーフィルター - スリット幅: 20 eV |
詳細 | Bidirectional tilt scheme, separated at 0 degrees |
撮影 | フィルム・検出器のモデル: GATAN K2 SUMMIT (4k x 4k) 検出モード: COUNTING / 平均露光時間: 1.5 sec. / 平均電子線量: 100.0 e/Å2 |
電子線 | 加速電圧: 300 kV / 電子線源: ![]() |
電子光学系 | C2レンズ絞り径: 70.0 µm / 最大 デフォーカス(補正後): 5.6 µm / 最小 デフォーカス(補正後): 4.6 µm / 照射モード: FLOOD BEAM / 撮影モード: BRIGHT FIELD / Cs: 2.7 mm / 最大 デフォーカス(公称値): 5.0 µm / 最小 デフォーカス(公称値): 5.0 µm / 倍率(公称値): 42000 |
試料ステージ | 試料ホルダーモデル: FEI TITAN KRIOS AUTOGRID HOLDER ホルダー冷却材: NITROGEN |
実験機器 | ![]() モデル: Titan Krios / 画像提供: FEI Company |
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画像解析
最終 再構成 | アルゴリズム: BACK PROJECTION / ソフトウェア - 名称: ![]() |
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CTF補正 | ソフトウェア - 名称: ![]() |